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胶原酶标准配制方法(细胞分离通用,Ⅰ/Ⅱ/Ⅳ 型胶原酶通用)
  • 发布日期:2026-07-06      浏览次数:21
    • 一、基础试剂与耗材

      1. 胶原酶粉末(根据组织选型:

      · 软组织 / 脂肪:Ⅰ 型

      · 骨骼、软骨:Ⅱ 型

      · 胰岛、肿瘤、上皮:Ⅳ 型)

      1. 基础溶剂:无钙镁 PBS / DMEM/F12 / HBSS(无菌,预冷)

      2. 辅助添加剂(按需):BSA、HEPES、DNase I、青霉素 - 链霉素

      3. 无菌滤器:0.22μm 水系滤膜

      二、常用工作浓度(临床 / 细胞实验)

      1. 储存液(10× 母液,1000 U/mL)

      配方:1000 U 胶原酶粉末 + 1 mL 无菌 HBSS / 无钙 PBS 例:配 10 mL 母液 胶原酶粉末:10000 U 溶剂:10 mL 无钙镁 HBSS 操作:

      1. 冰上避光溶解,轻柔吹打,禁止剧烈震荡(酶易失活)

      2. 0.22μm 滤器过滤除菌

      3. 分装 1 mL / 管,-20℃避光冻存,避免反复冻融

      2. 常规工作液(1×,100 U/mL)

      1 份 10× 储存液 + 9 份基础培养基 / HBSS 终浓度:100 U/mL,适用于脂肪、肝、皮下软组织消化

      3. 低浓度工作液(50 U/mL,娇嫩组织:胰岛、乳腺上皮)

      1 份 10× 母液 + 19 份缓冲液

      三、完整分步配制流程(无菌操作,全程冰浴)

      1. 预冷缓冲液 无钙镁 HBSS 37℃预热或 4℃冰浴,含钙镁会抑制胶原酶活性。

      2. 称量溶解 按目标单位称取胶原酶,缓慢加入缓冲液,冰上静置 10–20 min 自然溶解,轻吹打混匀。

      禁止涡旋高速震荡,蛋白变性失活。

      1. 添加保护剂(推荐)  10 mL 溶液加 10 mg BSA(0.1%),稳定酶活性,减少细胞损伤; 如需减少细胞团块:加 DNase I 至终浓度 10–20 μg/mL。

      2. 除菌过滤  0.22μm 一次性滤器负压过滤,胶原酶不能高压灭菌(高温失活)。

      3. 分装保存 母液分装冻存;工作液现配现用,4℃可存放 24 h,不建议长期冷藏。

      四、不同组织专用配方参考

      1. 脂肪组织消化液(Ⅰ 型胶原酶)

      HBSS + 100 U/mL Ⅰ 型胶原酶 + 1% BSA + 1% 双抗 37℃水浴摇床消化 30–60 min

      2. 软骨 / 骨组织(Ⅱ 型胶原酶)

      DMEM + 150 U/mL Ⅱ 型胶原酶 + 0.5% BSA,消化 2–4 h

      3. 胰岛分离(Ⅳ 型胶原酶)

      HBSS + 50–80 U/mL Ⅳ 型胶原酶 + HEPES 10 mM,冰上灌注、37℃短时消化

      五、关键注意事项

      1. 温度:胶原酶 37℃活性最高,溶解、保存全程低温;

      2. 离子:无钙镁缓冲液配制,Ca²⁺、Mg²⁺降低酶活;

      3. 灭活:消化结束后,加含血清培养基中和(血清蛋白结合胶原酶终止反应);

      4. 失效:冻融>3 次、室温放置超过 2 h 酶活性大幅下降,建议现配工作液;

      5. 避光:胶原酶粉末及溶液避光保存,光照加速失活。

      六、简易快速配液示例(10 mL 100 U/mL 工作液)

      1.  1 mL 1000 U/mL 胶原酶母液;

      2. 加入 9 mL 无菌无钙 HBSS;

      3. 加入 100 mg BSA 充分溶解;

      4. 0.22μm 过滤,即刻用于组织消化。